พฤกษเคมี ปริมาณฟีนอลิกทั้งหมด ปริมาณฟลาโวนอยด์ทั้งหมด ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ และฤทธิ์ยับยั้งเอนไซม์ไทรโรซิเนสจากสารสกัดหยาบดอกกล้วยไม้
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
งานวิจัยนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาพฤกษทางเคมีเบื้องต้น ปริมาณฟีนอลิกทั้งหมด ปริมาณฟลาโวนอยด์ทั้งหมด ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ และฤทธิ์ยับยั้งเอนไซม์ไทโรซิเนสของสารสกัดหยาบดอกกล้วยไม้ โดยดอกกล้วยไม้ที่ใช้ในการทดลองเป็นดอกกล้วยไม้สกุลหวาย 4 ชนิด ได้แก่ เอื้องแววมยุรา เอื้องสายหลวง เอื้องครั่ง และเอื้องเหลืองจันทบูร และกล้วยไม้สกุลม็อคคารา 4 ชนิด ได้แก่ จิตติ หมูทอง นอราบลู และ ประกายเพชร โดยนำกลีบดอกกล้วยไม้มาทำการสกัดด้วยเอทานอล จากการศึกษา พบว่า สารสกัดหยาบกล้วยไม้สกุลหวาย และสกุลม็อคคาราพบสารพฤกษเคมี 6 ชนิดที่เหมือนกัน ได้แก่ ฟลาโวนอยด์ คูมารินแทนนิน ทอร์ปีนอยด์ สเตียรอยด์ และคาร์ดิแอคไกลโคไซด์ เมื่อทำการศึกษาปริมาณฟีนอลิกทั้งหมด ปริมาณฟลาโวนอยด์ทั้งหมด พบว่า กล้วยไม้สกุลหวายชนิดแววมยุรา และสกุลม็อคคาราชนิดนอราบลูมีปริมาณมากที่สุด (208.58 ± 1.00 mg GAE/g, 219.65 ± 1.83 mg QE/g และ 198.23 ± 1.56 mg GAE/g , 203.67 ± 1.02 mg QE/g) และทำการทดสอบฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระด้วยวิธี DPPH assay และวิธี ABTS assay พบว่า กล้วยไม้สกุลหวายชนิดเอื้องแววมยุรา และกล้วยไม้สกุลม็อคคาราชนิดหมูทองมีฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระสูงที่สุด (EC50 15.34 ± 1.30 mg/ml, EC50 7.33 ± 1.02 mg/ml และ EC50 11.90 ± 1.27 mg/ml, EC50 8.43 ± 1.45 mg/ml) และพบว่า กล้วยไม้สกุลหวายชนิดเอื้องแววมยุรา และกล้วยไม้สกุลม็อคคาราชนิดหมูทองมีฤทธิ์ ในการยับยั้งเอนไซม์ไทโรซิเนสสูงที่สุด (EC50 15.09 ± 1.92 mg/ml และ EC50 12.44 ± 1.29 mg/ml) จากผลการทดลองสามารถใช้เป็นข้อมูลพื้นฐานในการพัฒนาผลิตภัณฑ์เครื่องสำอางที่มีคุณสมบัติฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ ฤทธิ์ยับยั้งเอนไซม์ไทรโรซิเนสในอนาคต และใช้เป็นข้อมูลในการศึกษาสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพของพืชประเภทกล้วยไม้ต่อไป
Downloads
Article Details
ลิขสิทธิ์บทความวิจัยที่ได้รับการตีพิมพ์เผยแพร่ในวารสารวิจัยและพัฒนา วไลยอลงกรณ์ ในพระบรมราชูปถัมภ์ ถือเป็นกรรมสิทธิ์ของสถาบันวิจัยและพัฒนา มหาวิทยาลัยราชภัฏวไลยอลงกรณ์ ในพระบรมราชูปถัมภ์ ห้ามนำข้อความทั้งหมดหรือบางส่วนไปพิมพ์ซ้ำ เว้นแต่จะได้รับอนุญาตจากมหาวิทยาลัยเป็นลายลักษณ์อักษร
ความรับผิดชอบ เนื้อหาต้นฉบับที่ปรากฏในวารสารวิจัยและพัฒนา วไลยอลงกรณ์ ในพระบรมราชูปถัมภ์ เป็นความรับผิดชอบของผู้นิพนธ์บทความหรือผู้เขียนเอง ทั้งนี้ไม่รวมความผิดพลาดอันเกิดจากเทคนิคการพิมพ์
References
ธริษตรี เทพจันทรา, นภัสกร ยะคะเรศ, และเปรมกมล นิธิธนกุล. (2561). การพัฒนาผลิตภัณฑ์บำรุงผิวจากสารสกัดผลมะม่วงหาวมะนาวโห่. ชลบุรี: คณะเภสัชศาสตร์ มหาวิทยาลัยบูรพา.
พิมพร ลีลาพรพิสิฐ. (2544). เครื่องสำอางสำหรับผิวหนัง. (พิมพ์ครั้งที่ 2). เชียงใหม่: คณะเภสัชศาสตร์ มหาวิทยาลัยเชียงใหม่
สมชาติ แม่นปืน. (2559). การยับยั้งเอนไซม์ไทโรซิเนสโดยสารบริสุทธิ์จากน้ำมันหอมระเหยของใบเร่วหอม (รายงานการวิจัย). มหาวิทยาลัยบูรพา.
อัญชนา เจนวิถีสุข. (2544) การตรวจหาและบ่งชี้ชนิดสารต้านอนุมูลอิสระจากผักพื้นบ้านและสมุนไพรไทย. เชียงใหม่: บัณฑิตวิทยาลัย มหาวิทยาลัยเชียงใหม่.
Amic, D., Davidovic-Amic D., Beslo D., & Trinajstic. N. (2003). Structure-radical scavenging activity relationships of flavonoids. Croatia Chemical Acta, 76(1), 55–61.
Ayoola, G.A., Coker, H.A.B., Adesegun, S.A., Adepoju-Bello, A.A., Obaweya, K., Ezennia, E.C., & Atangbayila, T.O. (2008). Phytohemical screening and antioxidant activities of some selected medicinal plants used for malaria therapy in southwestern Nigeria. Tropical Journal of Pharmaceutical Research, 7(3), 1019–1024.
Hossain, M.M. (2011). Therapeutic orchids: traditional uses and recent advances-an overview. Fitoterapia, 82(2), 102-140.
Jullapo, N. (2016). Phytohemical screening and biological activities of Dendrobium spp. Master’s Thesis. Burapha University.
Koleva, I.I., van Beek, T.A., Linssen, J.P., de Groot, A., & Evstatieva, L.N. (2002). Screening of plant extracts for antioxidant activity: A comparative study on three testing methods. Phytochemical Analysis, 13(1), 8-17.
Long, Z.P., Park, H.R., Park, Y.K., Lee, S.K., Park, J.H., & Park, M.K. (2002). Mushroom Tyrosinase Inhibition Activity of Some Chromones. Journal of Chemical and Pharmaceutical Bulletin, 50(3), 309-311.
Liu, Y.N., Pan, S.L., Peng, C.Y., Huang, D.Y., Guh, J.H., Chen, C.C., Shen, C.C., & Teng, C.M. (2010). Moscatilin repressed lipopolysaccharide-induced HIF-1α accumulation and NF-κB activation in murine RAW264.7 cells. Shock, 33(1), 70-75.
Luo, A.X., Ge, Z., Fan, Y.J., Luo, A.S., Chun, Z., & He, X.J. (2011). In vitro and in vivo antioxidant activity of a water-soluble polysaccharide from Dendrobium denneanum. Molecules, 16, 1579-1592.
Madhan, B., Krishnamoorthy, G., Rao, J. R., & Nair, B. U. (2007). Role of green tea polyphenols in the inhibition of collagenolytic activity by collagenase. International Journal of Biological Macromolecules, 41(1), 16-22.
Malešev, D., & Kuntić, V. (2007). Investigation of metal-flavonoid chelates and the determination of flavonoids via metal-flavonoid complexing reactions. Journal of the Serbian Chemical Society, 72(10), 921-939.
Nguyen, H.A., Lin, K.H., Huang, M.Y., Yang, C.M., Shin, T.H., Hsiung, T.C., Lin, Y. C., & Tsao, F.C. (2018). Antioxidant activities of the methanol extracts of various parts of Phalaenopsis Orchids with white, yellow, and purple flowers. Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca, 46(2), 457-465.
Phansawan, B. (2013). Free radicals, Antioxidants and antioxidant activity determination. Journal of Science and Technology, 21(3), 275–286.
Prapalert, W., Phottraithip, W., & Chotikadachanarong, K. (2019). Study of the activity of phytochemicals in wild orchids. and propagation guidelines for communities. Retrieved from http://www.research.cmru.ac.th/research59/ris/view.php?no=904.
Prommuak, C., De-Eknamkul, W., & Shotipruk, A. (2008). Extraction of flavonoids and carotenoids from Thai silk waste and antioxidant activity of extract. Separation and Purification Technology, 62(2), 444-448.
Shafazila, T.S., Lee, P.M., & Hung, L.K. (2010). Radical scavenging activities of extract and solvent-solvent partition fractions from Dendrobium Sonia ‘Red Bom’ flower. pp. 762-765. In International Conference on Science and Social Research 2010. Malaysia.
Siriwattanamethanon, N. (2020). Multi-coloured food There are many benefits (Part 1): What are multicolored foods. Retrieved from https://pharmacy.mahidol.ac.th/knowledge/files/0148.pdf.
Tsai, C.C., Chen, H.S., Chen, S.L., Ho, Y.P., Ho, K.Y., & Wu, Y.M. (2005). Lipid peroxidation: A possible role in the induction and progression of chronic periodontitis. Journal Periodontal Research, 40(5), 378–384.
Tsai, A.C., Pan, S.L., Liao, C.H., Guh, J.H., Wang, S.W., Sun, H.L., Liu, Y.N., Chen, C.C., Shen, C.C., Chang, Y.L., & Teng, C.M. (2010). Moscatilin, a bibenzyl derivative from the India orchid Dendrobrium loddigesii, suppresses tumor angiogenesis and growth in vitro and in vivo. Cancer Letters, 292(2), 163-170.
Yang, L., Wang, Z., & Xu, L. (2006). Simultaneous determination of phenols (bibenzyl, phenanthrene, and fluorenone) in Dendrobium species by high-performance liquid chromatography with diode array detection. Journal of Chromatography A, 1104, (1-2), 230-237.
Zhou, X.M., Zheng, C.J., Gan, L.S., Chen, G.Y., Zhang, X.P., Song, X.P., Li, G.N., & Sun, C.G. (2016). Bioactive Phenanthrene and Bibenzyl Derivatives form the Stems of Dendrobium nobile. Journal of Natural Products, 79, 1791-1797.