GROWTH OF MICROALGAE chlorella protothecoides BUUC1602 FROM INOCULUM PRESERVED BY CELL IMMOBILIZATION TECHNIQUE IN CALCIUM ALGINATE
Article Sidebar
Main Article Content
Abstract
Microalgae inoculum is one of the important factors for their growth in the culture process. This research investigated the growth of Chlorella protothecoides BUUC1602 from inoculated cultures obtained by different immobilization and storage methods. Earlier in the experiment, microalgae were cultured by cell suspension and immobilization method using the stock culture in form of cell suspension with Guillard's F/2 media, salinity 30 PSU. The microalgae culture flask was placed at room temperature of 26±1 °C and exposed to 4000 lux. The results revealed that the specific growth rates of microalgae cultured with cell suspension and immobilization methods were 0.34 and 0.53 per day, respectively. Then, microalgae were immobilized on calcium alginate. The microalgal bead was prepared without and add glycerol to a concentration of 5% volume per volume. The immobilized microalgae beads were then stored using different methods i.e. freezing at -20 °C and drying by lyophilization method. Microalgae beads were kept for 30 days, dissolved, and cultured in an F/2 media as suspended cells. The results showed that the microalgae inoculum in form of an immobilized microalgae bead with glycerol added and preserved by the lyophilized method had a better growth of microalgae compared to the other experiments. It produced a maximum cell density of 138x104 cells/ml and a specific growth rate of 0.69 per day. The finding confirms that for storage of the inoculum of C. protothecoides BUUC1602 and for convenience to maintain then it should be created by immobilizing the microalgae on calcium alginate with glycerol added and drying by lyophilization method.
Downloads
Article Details
Copyright Notice
The copyright of research articles published in the VRU Research and Development Journal Science and Technology Journal belongs to the Research and Development Institute, Valaya Alongkorn Rajabhat University under the Royal Patronage. Reproduction of the content, in whole or in part, is prohibited without prior written permission from the university.
Responsibility
The content published in the VRU Research and Development Journal Science and Technology Journal is the sole responsibility of the author(s). The journal does not assume responsibility for errors arising from the printing process.
References
จตุพงษ์ พิรุฬห์ภาวดี. (2559). ผลของรูปแบบการเพาะเลี้ยงต่อการเติบโตและผลผลิตมวลชีวภาพของสาหร่ายสีเขียว Chlorella sp. ที่แยกได้จากอ่าวหมู จังหวัดจันทบุรี. ปัญหาพิเศษ วิทยาศาสตรบัณฑิต คณะเทคโนโลยีทางทะเล, มหาวิทยาลัยบูรพา วิทยาเขตจันทบุรี.
ชลี ไพบูลย์กิจกุล, มะลิวัลย์ คุตะโค, รชนิมุข หิรัญสัจจาเลิศ, ศศิฬา ฉิมพลี และเบ็ญจมาศ ไพบูลย์กิจกุล. (2560). ผลของความเข้มข้นของกลีเซอรอลและระยะเวลาในการเก็บรักษาต่ออัตราการรอดของสาหร่าย Chlorella sp. แก่นเกษตร, 45(ฉบับพิเศษ 1), 859-864.
บุรินทร์ มนตรีวิสัย, ธีรวัฒน์ สีทองแดง, ทรงกลด ใบยา, บงกช บุญบูรพงศ์, อาภรณ์ บัวหลวง และสุรศักดิ์ ละลอกน้ำ. (2564). การผลิตเซลล์ตรึงไซยาโนแบคทีเรียออสซิลลาทอเรีย ในการเพิ่มปริมาณออกซิเจนในน้ำเสียสังเคราะห์. วารสารเกษตรพระวรุณ, 18(2), 16–23.
ลัดดา วงศ์รัตน์. (2543). คู่มือการเลี้ยงแพลงก์ตอนพืช. พิมพ์ครั้งที่ 3. กรุงเทพฯ: มหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์.
สมเกียรติ แว่นมณี, กานต์ธิดา บุญญาพงศ์, ปวีณา ตปนียวรวงศ์ และมะลิวัลย์ คุตะโค. (2562). การเติบโตและองค์ประกอบกรดไขมันของไซโคพอยด์โคพีพอด Apocyclops royi ที่เลี้ยงด้วยสาหร่ายต่างชนิดกัน. การประชุมวิชาการระดับชาติวิจัยรำไพพรรณี ครั้งที่ 13, 19 ธันวาคม 2562 ณ แซนด์ดูนส์ เจ้าหลาว บีช รีสอร์ท. จันทบุรี: สถาบันวิจัยและพัฒนา มหาวิทยาลัยราชภัฏรำไพพรรณี.
สมใจ ศิริโภค. (2547). จุลชีววิทยาอุตสาหกรรม. กรุงเทพฯ: ศูนย์สื่อเสริมกรุงเทพฯ.
Amini Khoeyi, Z., Seyfabadi, J., & Ramezanpour, Z. (2012). Effect of light intensity and photoperiod on biomass and fatty acid composition of the microalgae, Chlorella vulgaris. Aquaculture International, 20(1), 41-49.
Caporgno, M. P., Haberkorn, I., Böcker, L., & Mathys, A. (2019). Cultivation of Chlorella protothecoides under different growth modes and its utilisation in oil/water emulsions. Bioresource Technology, 288, 121476.
Chen, Y. C. (2006). Immobilization of twelve benthic diatom species for long term storage and as feed for post larval abalone Haliotis diversicolor. Aquaculture, 263(1-4), 97-106.
Guillard, R. R., & Sieracki, M. S. (2005). Counting cells in cultures with the light microscope. Algal Culturing Techniques, 239-252.
Ibrahim, I. A., & Elbaily, Z. I. (2020). A review: Importance of Chlorella and different applications. Alexandria Journal of Veterinary Sciences, 65(1), 16-34.
Jimenez-Perez, M. V., Sanchez-Castillo, P., Romera, O., Fernandez-Moreno, D., & Pérez-Martınez, C. (2004). Growth and nutrient removal in free and immobilized planktonic green algae isolated from pig manure. Enzyme and Microbial Technology, 34(5), 392- 398.
Kapoore, R. V., Huete-Ortega, M., Day, J. G., Okurowska, K., Slocombe, S. P., Stanley, M. S., & Vaidyanathan, S. (2019). Effects of cryopreservation on viability and functional stability of an industrially relevant alga. Scientific Reports, 9(1), 1-12.
Kihika, J. K., Wood, S. A., Rhodes, L., Smith, K. F., Thompson, L., Challenger, S., & Ryan, K. G. (2022). Cryoprotectant treatment tests on three morphologically diverse marine dinofagellates and the cryopreservation of Breviolum sp. (Symbiodiniaceae). Scientific Reports, 12(646), 1-12.
Lin-Lan, Z., Jing-Han, W., & Hong-Ying, H. (2018). Differences between attached and suspended microalgal cells in ssPBR from the perspective of physiological properties. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology, 181, 164-169.
Moreno-Garrido, I. (2008). Microalgae immobilization: current techniques and uses. Bioresource Technology, 99(10), 3949-3964.
Perez-Garcia, O., De-Bashan, L. E., Hernandez, J-P., & Bashan, Y. (2010). Efficiency of growth and nutrient uptake from wastewater by heterotrophic, autotrophic, and mixotrophic cultivation of Chlorella vulgaris immobilized with Azospirillum brasilense. Journal of Phycology, 46(4), 800-812.
Romo, S., & Pérez-Martínez, C. (1997). The use of immobilization in alginate beads for long-term storage of Pseudanabaena galeata (Cyanobacteria) in the laboratory 1. Journal of Phycology, 33(6), 1073-1076.
Senko, O., Stepanov, N., Maslova, O., & Efremenko, E. (2022). “Nature-like” cryoimmobilization of phototrophic microorganisms: new opportunities for their long-term storage and sustainable use. Sustainability, 14(661), 1-16.
Spolaore, P., Joannis-Cassan, C., Duran, E., & Isambert, A. (2006). Commercial applications of microalgae. Journal of Bioscience and Bioengineering, 101(2), 87-96.
Stein, J. R. (Ed.). (1973). Handbook of phycological methods: Culture methods and growth measurements. New York: Cambridge University.
Tanniou, A., Turpin, V., & Lebeau, T. (2012). Comparison of cryopreservation methods for the long term storage of the marine diatom Haslea ostrearia (simonsen). Cryobiology, 65(1), 45-50.
Team, R. C. (2020). R: A language and environment for statistical computing. R Foundation for Statistical Computing, Vienna, Austria. Copenhagen: European Environment Agency.
Vasilieva, S. G., Lobakova, E. S., Lukyanov, A. A., & Solovchenko, A. E. (2016). Immobilized microalgae in biotechnology. Moscow University Biological Sciences Bulletin, 71(3), 170–176.
